viernes, 20 de junio de 2014

Practica 7: velocidad de sedimentación globular

Introducción:
La velocidad de sedimentación globular se modifica siempre en que existe un desequilibrio humoral que afecte a las proteínas plasmáticas: índices elevados de fibrinógeno y en menor grado de globulinas.

La VGS constituye una medida de agregabilidad de los eritrocitos y depende fundamentalmente de los siguientes factores:
1: tamaño de los eritrocitos
2: diferencia de densidad entre eritrocitos y el plasma
3: viscosidad plasmática (concentración de fibrinógeno y/o globulinas)
4: temperatura ambiente
Para la prueba la sangre no debe coagularse, motivo por el cual se adiciona a la sangre extraída una sustancia anticoagulante (la más común es citrato sódico 3,8 %, en proporción volumétrica exacta de 1 parte de citrato por cada 3 de sangre).
La sangre homogeneizada se carga en una pipeta. Se acomoda la pipeta en un soporte y a determinado tiempo preestablecido (60 minutos si está la pipeta a 90 grados de la mesa donde se apoya el soporte, o menos tiempo cuanto menor sea el ángulo entre la mesa y la pipeta; hay soportes especiales que permiten inclinaciones controladas para obtener ángulos diferentes a 90 grados) se procede a leer cuántos milímetros han sedimentado (decantado) los hematíes.
La sedimentación globular se realiza en tres etapas:
1: Hemaglutinación: es la tendencia de los hematíes a formar agregados en forma de "pilas de monedas". Estos sedimentan de forma muy lenta por lo que van a determinar la velocidad de todo el proceso
2: Sedimentación: desplazamiento de los hematíes hacia el fondo de la pipeta a velocidad constante.
3: Acúmulo o depósito en el fondo.
El principio físico de esta prueba se basa en la Ley de Stokes, considerando los hematíes como esferas suspendidas en un medio infinito.

Objetivo:
Realizar la práctica de VSG correctamente y observar la velocidad de sedimentación de la sangre del paciente.
Planteamiento problema:
Investigar en cuanto tiempo se sedimenta los eritrocitos en la muestra de sangre.
Hipótesis:

1°: Entre los factores físicos que afectan la VSG se destacan la morfología eritrocitaria y el volumen corpuscular medio, observándose que a mayor tamaño de los glóbulos rojos, mayor velocidad de sedimentación.
2°: Entre los factores no dependientes de la muestra y que afectan el resultado se encuentran la temperatura, la hemólisis, el tiempo transcurrido desde la extracción, o la limpieza de material. Esto pone de manifiesto la importancia de la perfecta estandarización del método.
3°: Uno de los efectos sistémicos que tiene el proceso inflamatorio es un aumento de la VSG.

Material:
-pipeta de sedimentación (tubo de westergreen o wintrobe).
-soporte con capacidad variable que inmovilice la pipeta en posición vertical.
-pipetas Pasteur con punta larga o cualquier otro sistema de succión.

Metodologia:
1: mezclar el tubo de sangre perfectamente con agitación mecánica.
2: llenar el tubo de wintrobe hasta que la sangre alcance la marca de 0 mm.
3: colocar el tubo de wintrobe verticalmente en el soporte.
4: cuidar que la temperatura se encuentre entre 10 y 25° c
5: dejar reposar durante 1 hora exactamente.
6: transcurrido el tiempo, se lee la distancia existente entre la superficie del meñisco correspondiente a la columna eritrocitaria y la parte superior de la columna de sangre, situada a nivel de la marca o de la escala graduada. El valor de (esta distancia se expresa en mm/hr).

Marco teorico:
La sedimentación globular se produce debido a que la densidad de los eritrocitos es mayor que la del plasma. La caida de los eritrocitos ocasiona un desplazamiento hacia arriba del plasma, produciendo así una corriente ascendente y una fuerza de retardo, por lo tanto la velocidad de sedimentación globular (VSG) depende de la interacción entre fuerzas físicas opuestas.

En sangre de personas normales estas fuerzas opuestas tienden a igualarse y consecuentemente la VSG es mínima.
Los valores de referencia son:
Niños y adolescentes: 1-13 mm/hr
Hombres: 0-5 mm/hr
Mujeres: 0-13 mm/hr

Resultados:
Análisis de resultados:
La velocidad de sedimentación globular de la muestra estuvo dentro de lo normal saliendo como resultado: 7 mm/hr.

Conclusión:
La práctica de sedimentación de glóbulos en la sangre es muy importante ya que alerta sobre procesos infecciosos e inflamatorios en el paciente y puede causar la muerte.

Practica 6: COPRO

Introducción:
Es un estudio de laboratorio para ver si tienes lombrices, amibas, parásitos, bacterias, como está la flora intestinal, creo que incluso para ver si hay sangre oculta.
Debe recolectar 3 muestras de excremento, en 3 días diferentes. Cada muestra debe ser recolectada en un contenedor diferente. No deben pasar más de 9 días entre la obtención de la primera y la última muestra. Cada muestra debe ser aproximadamente del tamaño de una nuez, o un aproximado de 5 ml (el equivalente a una cucharada sopera) como mínimo cuando se trata de una muestra diarreica. Las muestras pueden ser conservadas en refrigeración mientras son entregadas al laboratorio.
La materia fecal para coprocultivo debe estar libre de contaminantes como orina o papel higiénico. Se puede obtener la muestra recogiendo las heces en una bolsa plástica adosada a la taza del inodoro o utilizando equipos de recolección comerciales. En caso de bebés, se puede adosar la bolsa al pañal. Una vez obtenida la muestra se debe colocar en un recipiente estéril y derivarla al laboratorio lo más rápido posible.


Objetivo:
Que el alumno realice una prueba de coproparasitoscopia de una muestra recolectada de si mismo.


Planteamiento problema:
Los alumnos deben de realizar una prueba que es fundamental en los laboratorios clínicos y con esta práctica además de aprender a realizar el examen perderán un poco el asco o miedo hacia este tipo de análisis.


Hipótesis:
1.      En caso de que los alumnos no puedan traer su muestra deberán solicitar a un familiar que les regale un poco de materia fecal
2.      De ser necesario la prueba se realizara un alumno a la vez para que todos puedan entender como se realiza el copro
3.      Los alumnos aprenderán de manera correcta como realizar un copro
MATERIAL Y REACTIVOS
1.      tubos de ensaye                
2.      muestra de copro         
3.      gradilla                                 
4.      solución salina
5.      centrifuga                             
6.      agua
7.      microscopio
8.      franela
9.      porta objetos
10.  cubre objetos


METODOLOGIA:
Antes que nada debemos lavar nuestra mesa.
Una vez lavada, sacamos nuestra muestra debidamente rotulada y la colocamos en un tubo de ensaye también rotulado.
Debemos batir nuestra muestra con una solución salina, lo colocamos en la centrifuga por 5 minutos a 2500 revoluciones.
Cuando nuestra muestra este lista decantamos para que solo nos quede el sedimento.
Después de eso colocaremos agua destilada a nuestro tubo, en un cubre objetos colocaremos una gota de lugol y lo pondremos encima de nuestro tubo.
Después de un par de minutos, tomaremos con mucho cuidado el cubre objetos y lo colocaremos en el porta objetos.
Luego miramos y reportamos nuestro sedimento.
Marco teórico:
El coprocultivo o examen coproparasitoscópico consiste en el cultivo de materia fecal. Es un método de diagnóstico microbiológico que permite identificar diferentes organismos causantes de enfermedades gastrointestinales.
El método coproparasitóscopico directo es el más antiguo que se conoce y fue el primero. Utilizado por Antonio Van Lewenhooke en el siglo XVIII observando trofosoitos de Giardia Lambía.
Un examen coproparasitoscopico es el estudio de material fecal para la búsqueda e identificación de formas parasitarias. Puede ser cualitativa o cuantitativa.
En este estudio, el material fecal mas utilizado es el recién obtenido por expulsión natural del paciente, ya sean bien formadas o ecuaciones diminutas en consistencia con moco o sangre. Este método es de gran utilidad para la detección en fresco de trofozoitos de Entamoeba histolitica, Giardia lamblia y Balantidium coli. En la suspensión teñida con lugol se puede identificar con facilidad quistes de protozoos.


Análisis de resultados:
No se encontró sangre ni tampoco huevos, quistes o parásitos microscópicos en la coproparacitoscopia.



Conclusiones:
la coproparacitoscopia es un estudio muy importante ya que los paracitos o lombrices que puede identificar esta práctica pueden causar la muerte en el ser humano, en México somos el numero 1° en obesidad y esto con lleva la mala alimentación, causa enfermedades estomacales y como lo mencione antes puede causar la muerte, se debe tener cuidado con el alimento que se ingiere y tener limpieza al comer, antes y después de ir al baño.


Bibliografía

Practica 5: EGO

   Introducción:

El análisis de orina es de suma importancia para el diagnóstico de muchos procesos patológicos a nivel de Riñón y vías urinarias; Así como también la detección de sustancias de interés médico; de ahí la importancia de la correcta recolección de la muestra.
Dentro de las enfermedades urológicas que el análisis de orina ayuda a diagnosticar están: cistitis (Inflamación de la vejiga), nefritis (inflamación del riñón, que puede cursar con infección bacteriana, pielonefritis, o sin ella, glomerulonefritis)) y la nefrosis (degeneración del riñón sin inflamación).
Este examen está constituido por un conjunto de pruebas que detectan y miden de manera semicuantitativa distintos componentes eliminados por la orina, incluyendo productos intermediarios del metabolismo así como también células, bacterias, y fragmentos celulares.La orina es producida por los riñones, que filtran productos de desecho y productos metabólicos intermediarios eliminándolos de la sangre, a la vez que ayudan a regular la cantidad de agua del organismo; todo ello, conservando proteínas, electrolitos y otros compuestos que el organismo puede reutilizar. Todo lo que no es necesario se elimina por la orina, siendo trasnportada la orina desde los riñones hasta la vejiga urinaria, y excretándose al exterior a través de la uretra.
La orina suele ser amarillenta y de color claro, pero cada vez que se orina, el color, la cantidad, la concentración y el contenido de la orina pueden variar ligeramente debido a la variedad de constituyentes que en ella se encuentran.
Antecedentes
Ya en la antigüedad era común el diagnóstico de enfermedades con base en la observación de la orina. El método, denominado uroscopia, basado en la observación de las propiedades organolépticas de la orina fue descrito por Galeno y su aplicación tuvo lugar por muchos siglos en el contexto de la teoría de los cuatro humores apoyada por Hipócrates.
Aunque la tecnología de análisis químico cualitativo y cuantitativo permitió desde finales del Siglo XIX la superación del método uroscopico, las propiedades organolépticas, típicamente olor y color permiten todavía un diagnóstico inmediato de numerosas enfermedades.

 El “EGO” Es una prueba de gran importancia, se lleva acabo para tener el conocimiento del estado en el cual se encuentra el sistema urinario del paciente así como también para que el medico de un diagnóstico preciso si es que existe enfermedad renal y se le dé el debido tratamiento.
En el examen general de orina se reporta: 1) Color, 2) Aspecto, si es aspecto turbio se mide en cruces 3) Densidad, 4) pH, 5) Glucosa, normalmente no hay glucosa en orina, porque el umbral renal de la glucosa es de 1 8Omg, cantidad de glucosa que normalmente no se tiene en sangre, por eso la glucosuria es un sello inminente de Diabetes, 6) Proteínas, normalmente no hay proteínas en la orina, ya que son moléculas muy grandes que no alcanzan a atravesar los poros de los glomérulos, 7) Nitritos, normalmente no hay en orina, 8) Acetona, puede aparecer cuando el pxesta en ayunas, se reporta en cruces. En px diabéticos descompensados con una cetoacidosis diabética aunque no estén en ayunas aparecen grandes cantidades de acetona en orina, 9) Cilindros, 10) Leucocitos, 11) Hematíes, 12) Cristales, 13) Células Escamosas, no tiene mucha importancia, 14) Bacterias, 15) Pigmentos Biliares.


COMPONENTES MICROSCÓPICOS DE LA ORINA NORMAL

En la orina normal concentrada, ácido úrico (a ph ácido) y los fosfato (a ph alcalino) precipitan a temperatura ambiente o en refrigeración y ,por tanto, se encuentran a menudo en el estudio de las muestras. Por el contrario no se aprecian cristales de urea o de cloruro de sodio, aunque ambas sustancias se hallan en concentraciones elevadas.

La orina normal contiene también elementos "formes": eritrocitos y leucocitos, células epiteliales de los túbulos renales.

CÉLULAS DEL EPITELIO TRANSICIONAL Y CÉLULAS ESCAMOSAS

Se desconoce el origen de los hematíes y de los leucocitos. La proporción entre ambos es mucho más favorable a los segundos que en la sangre, por lo que se ha postulado una diapédesis de éstos últimos a través de la membrana glomerular o de los túbulos.
Debido a las dificultades inherentes a la recogida de muestras al azar y a los distintos métodos de estudios microscópicos, no existe un acuerdo general sobre lo que constituyen los "valores normales".
En los hombres y mujeres sanos en general no se aprecian hematíes en el estudio microscópico del sedimento. En los varones sanos se encuentra algún leucocito ocasional o alguna célula epitelial no escamosa, y quizás un número algo mayor de ambos en la mujer.
En el individuo normal se aprecian muy pocos cilindros; los que existen son los de tipo hialino y pueden mostrar algunos gránulos finos.

TOMA DE MUESTRA

Para lograr resultados precisos, confiable, y reproducible en la realización del uroánalisis es necesario evitar errores en la recolección y conservación de la muestra.

RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA

· Recipientes químicamente limpios, secos y provistos de tapa.
· Primera muestra matinal.
· Evitar contaminación (Ej: mestruación, flujo vaginal).
· Realizar limpieza y recolectar la orina de mitad de la micción.
Para el estudio químico y microscópico, basta en general una muestra obtenida por micción.
Para la mayoría de los estudios corrientes, es mejor una muestra concentrada que una diluida.
La concentración de solutos y de elementos formes, varía lo largo del día y depende de la ingestión de líquidos. La primera muestra de orina eliminada por la mañana al levantarse suele ser la más concentrada, ya que el paciente no ha ingerido agua durante las horas de sueño, en consecuencia ésta muestra es la más adecuada para el estudio del contenido en nitritos y proteínas . Una persona que se mueve excreta mayor cantidad de proteínas, pero desde el punto de vista comparativo es mejor utilizar las muestras matutinas.
También pueden obtenerse datos importantes mediante determinación de volumen y peso específico (densidad) de la muestra.
a. Abrir el recipiente sólo en el momento del empleo.
b. Lavarse la región genital con abundante agua y jabón. En caso del varón, el glande deberá exponerse adecuadamente. En las mujeres deberá separarse los labios de la vulva. Enjuagar bien con agua no secar.
c. Descartar la parte inicial de la orina, recogiendo una muestra de la porción media de la micción en el recipiente sin que éste llegue a estar en contacto con el cuerpo.
d. Cerrar el recipiente y llevarlo inmediatamente al laboratorio para el análisis. En lactantes y niños pequeños pueden recolectarse las muestras en colectores pediátricos que se fijan a los genitales.
e. No utilizar ni óvulos, cremas, etc ni tener relaciones sexuales la noche anterior de la recogida de la muestra.
f. En pacientes con sondas vesical, se cierra la sonda por espacio de 30 minutos, se desinfecta la sonda, se punciona con aguja muy delgada en forma diagonal.
Objetivo:
Realizar el examen de orina correctamente y revisar si nuestra orina se encuentra en buen estado y no tiene signos de alguna enfermedad urinaria.

Planteamiento problema:

El sistema urinario del ser humano es muy importante por lo cual se hace este estudio para saber si se encuentra trabajando como se debe.

Hipótesis:

1°: Los alumnos aprenderán de manera correcta como realizar un ego y aprenderán a analizar los cristales de la orina.
2°: En caso de que los alumnos no puedan traer su muestra en ayunos deberán de llevar un recipiente para que puedan ir por su muestra al sanitario
3°: debe de tomarse la muestra con cuidado para que salga bien

Material:

Tubos de ensaye             muestra de orina         
gradilla                              benzol
centrifuga
tiras de ph
Franela
Porta objetos
Cubre objetos
microscopio
Metodología:
Antes que nada debemos lavar nuestra mesa.
Una vez lavada, sacamos nuestra muestra debidamente rotulada y la colocamos en un tubo de ensaye también rotulado.
Le medimos su pH y lo colocamos en la centrifuga por 5 minutos a 2500 revoluciones.
Cuando nuestra muestra este lista decantamos para que solo nos quede el sedimento.
Re suspendemos el sedimento de izquierda a derecha y colocamos una gota en el porta objetos luego la cubrimos con el cubre objetos y ponemos nuestra vista a 10x.
Luego miramos y reportamos nuestro sedimento.

Marco teórico:

TOMAS EL AGUA, LLEGA AL ESTOMAGO Y DE ALLI AL INTESTINO DELGADO DONDE SE ABSORBE EL LIQUIDO EN UN 80%, EL RESTANTE PARA EL INTESTINO GRUESO Y SE ABSORBE EL RESTO DE AGUA.
EL LIQUIDO QU ES ABSORVIDO PARA AL HIGADO PARA SER PURIFICADO Y ABSORBER LOS NUTRIENTES QUE SEAN UTILES PARA EL CUERPO.
DE ALLI EL LIQUIDO PASA ATRAVES DE LAS VENAS A LA SANGRE Y DE ALLI LLEGA AL RIÑON DONDE SE PURIFICA Y SE ELIMINA EN FORMA DE ORINA, EN EL RIÑON EL AGUA SE MEZCLA CON LA BILIRRUBINA QUE LE DA SU COLOR AMARILLO, LA BILIRRUBINA ES SOLO LOS DESECHOS QUE SALEN DEL HIGADO Y TIÑEN LA ORINA Y LAS HECES.
ENTRE MAS DESECHO SAQUE EL HIGADO MAS SE TEÑIRA LA ORINA Y TAMBIEN DEPENDE DE QUE TANTO AGUANTES LAS GANAS DE IR AL BAÑO.
EL COLOR NO DEPENDERA DE LO QUE TOMES SIEMPRE O DE LO QUE COMAS, EN MUY POCOS CASOS SE TIÑE LA ORINA POR ALGO QUE COMAS, TODO EL TRABAJO DEPENDE DEL RIÑON Y EL HIGADO.

Contenidos anormales de la orina:
Cristales de urato de amonio en la orina: corpúsculos de color café amarillento con espículas largas e irregulares. Se consideran patológicos sólo si aparecen en orina recién emitida.
Glucosuria: es la presencia de glucosa en la orina y aparece sobre todo en la diabetes mellitus;
Hematuria: es la presencia de sangre en la orina, y deben descartarse, entre otras cosas: infección urinaria, litiasis urinaria, glomerulonefritis, neoplasia (cáncer de vejiga, uréter, riñón, próstata)
Bacteriuria: es la presencia de bacterias en la orina;
Piuria: es la presencia de pus en la orina;
Proteinuria: es la presencia de proteínas en la orina, como suele observarse en: glomerulonefritis, infección urinaria, intoxicaciones, diabetes y otras.

Resultados:

Mi orina salio bien, sin ningún problema

Análisis de resultados:
pH: 7.5
color: transparente, amarillo, tenia burbujas, salió con espuma, olor a acido

Conclusión:

Aunque no fue la mayoría de los alumnos los que aprendieron bien como hacer un ego se quedaron con la idea de cómo realizarlo y bueno como dicen la práctica hace al maestro.

Referencias:

Practica 4: Grupo Sanguíneo

Introducción:

Un grupo sanguíneo es una clasificación de la sangre de acuerdo con las características presentes o no en la superficie de los glóbulos rojos y en el suero de la sangre. Las dos clasificaciones más importantes para describir grupos sanguíneos en humanos son los antígenos (el sistema ABO) y el factor Rh.
Este método separa los tipos de sangre en cuatro categorías:
-tipo A
-tipo B
-tipo AB
-tipo O


Esto quiere decir que es un método para decirle cual es el tipo específico de sangre que tiene cada ser humano. El tipo de sangre que se tenga depende de si hay o no ciertas proteínas, llamadas antígenos, en sus glóbulos rojos.

Este examen se hace para determinar el tipo de sangre de una persona. Los médicos necesitaran conocer su tipo de sangre cuando le vayan a hacer una transfusión de sangre o un trasplante, debido a que no todos los tipos de sangre son compatibles entre si, por ejemplo:

-          si usted tiene sangre tipo A, únicamente puede recibir sangre tipo A y tipo O

-          si usted tiene sangre tipo B, únicamente puede recibir sangre tipo B y tipo O

-          si usted tiene sangre tipo AB, puede recibir sangre tipo A, AB, B y O.

-          si usted tiene sangre tipo O, únicamente puede recibir sangre tipo O

Objetivo:
     Realizar adecuadamente la determinación de grupo sanguíneo.

Planteamiento problema:

Identificación del tipo de sangre (en este caso, mi sangre) para que en algún caso necesite transfusión de sangre o trasplante de algún órgano.

Hipótesis:

1°: la determinacion de grupo sanguineos del sistema ABO se efectua enfrentando los globulos rojos del paciente con anticuerpos monoclonales anti-A, anti-B o anti-AB.

2°: No utilizar los reactivos fuera de la fecha de vencimiento.

3°: Utilizar los reactivos guardando las precauciones habituales
de trabajo en el laboratorio de química clínica.

Material:

-pipeta pasteur
-tubos de ensayo
-muestra de sangre
-antigenos A, B,AB y O

Metodología:

El examen para determinar el grupo sanguíneo se denomina sistema o tipificación ABO. Su sangre se mezcla con anticuerpos contra sangre tipo A y tipo B, y la muestra se revisa para ver si los glóbulos sanguíneos se pegan o se aglutinan. Si dichos glóbulos se aglutinan eso significa que la sangre reacciono con uno de los anticuerpos.
Marco teórico:

1°-  extraer la sangre del paciente
2°- 1 ml de muestra de sangre se mezcla con suero RH (hasta que parezca agua roja)
3°-despues separar los sueros anti A, B, AB, O y etiquetarlos
4°- agregar una gota de la muestra en cada tubo de ensayo qtiquetado con el suero correspondiente
5°- agitar y esperar 5 min
6°- observar y ver en que tipo de suero se aglutino la muestra de sangre y a partir de ello identificar que tipo de sangre es, para mas ayuda ver la tabla 1.1
1.1

Resultados:

Pude analizar que tipo de sangre soy, y soy AB+
               
Análisis de resultados:

Investigue un poco de mi tipo de sangre y obtuve que puedo recibir cualquier tipo de sangre A, B, AB y O, en caso de que tenga algún accidente y necesite transfusión de sangre, el tipo de sangre AB no es muy causal en el mundo como lo demuestra la tabla:

Conclusión:

Se debe de tomar muchas precauciones al hacer esta practica y que todo salga bien como que los reactivos no estén caducados y leer las etiquetas de los sueros por que son nocivos por ingestión, contienen acida sódica que es muy toxica.

Referencias:


Practica 3: preparaciones fijas

Introducción:
La fijación es un método que se utiliza para preservar la morfología y la composición química de las células que componen una preparación microscópica, consiste en agregar agentes fijadores a la muestra como acetona, formaldehido o glutaraldehido, los cuales mantienen las interacciones entre las moléculas (proteínas, ácidos nucleicos, etc.) y permiten que las preparaciones duren en buen estado durante meses o años.
Existen dos tipos de preparaciones microscópicas, éstas corresponden a las preparaciones permanentes y a las preparaciones temporales. Ambas deben ser lo más delgadas posible para dejar pasar la luz a través de él y así lograr una buena observación.
Preparaciones fijas
Las preparaciones permanentes son aquellas que se han sometido a un proceso largo de preparación, el que permite que se mantengan en buenas condiciones para su observación por periodos prolongados de tiempo. La preparación de estas muestras incluye etapas de fijación del material, deshidratación, inclusión en parafina, corte de la muestra en capas muy finas con un micrótomo, colocación de estas capas que contienen la muestra en un portaobjetos.
Preparaciones temporales
Los preparados temporales se realizan generalmente con agua destilada, glicerina o simplemente agua corriente (un medio liquido), la utilidad es simple, observar alguna estructura u organismo "in vivo", por ejemplo para observar los protozoos que habitan en cuerpos de agua dulce se utiliza estos preparados; solo se toma una gota de agua de ese cuerpo de agua, se la coloca entre porta y cubreobjetos y se la mira al microscopio, tienen una duración limitada.
Las preparaciones temporales corresponden a cortes frescos del material a observar, los que se realizan en el momento y tienen una corta duración. Una vez realizados los cortes, se coloca una gota de agua en un portaobjetos, y en ella se ubica un trozo del material a observar, el que debe quedar completamente cubierto por el agua. Sobre esta preparación se coloca cuidadosamente un cubreobjetos, evitando la formación de burbujas que interfieren en la observación microscópica. Finalmente, se elimina exceso de agua, y la preparación puede teñirse para ser observada.



Objetivo:
     realizar preparaciones fijas adecuadamente con resina y miel Caro.

Planteamiento problema:
Al realizar las preparaciones fijas se debe de ser exacto en el el uso de miel Caro y resina para que la preparación fija salga con éxito y también por la falta de material en el laboratorio.


Hipótesis:
1°: Si realizamos una solución fija correctamente, nos sirva para prácticas siguientes.
2°: Si diluimos la solución 1:2 nuestra preparación fija durara más tiempo.
3°: se debe de manejar con cuidado la miel caro y la resina ya que al hacer la práctica se exige guantes y el reactivo que utilizamos es muy pegajoso y nos dificulta hacer la preparación, al igual que ensucia nuestra preparación fija.

Material:
-agitador
-porta objetos
-cubre objetos
-resina
-esmalte
-miel Caro


Metodología:
Las tinciones y colorantes se usan con frecuencia en biología y en medicina para destacar estructuras en tejidos biológicos para observación, a menudo con la ayuda de diferentes tipos de microscopios. Las tinciones pueden ser usadas para definir y examinar tejidos en bruto (resaltando, por ejemplo, fibras musculares o tejido conectivo), poblaciones celulares (clasificando diferentes células sanguíneas, por ejemplo) u orgánulos dentro de células individuales.


Marco teórico:
1°-  poner la muestra a observar en el portaobjetos
2°- agregar una gota de miel caro y tapar con el cubreobjetos
3°-poner otra muestra en otro cubreobjetos.
4°- agregar una gota de resina y una gota de miel caro y tapar con el cubreobjetos.
5°- analizar la preparación fija a simple vista y en microscopio
6°- anotar las observaciones de la preparación y etiquetar con tipo de muestra.
Resultados:
Nuestra preparación fija salio con éxito.

Análisis de resultados:
Nuestras preparaciones fijas nos ayudan a la práctica técnica ya que con ella podemos hacer que las muestras que deseemos conservar nos duren más tiempo.
Conclusión:
Esta práctica se dificulto por la miel caro ya que es muy pegajosa y afectaba nuestras preparaciones fijas, se ensuciaban y no se veían bien pero con trabajo se pudo lograr nuestro objetivo que era realizar las preparaciones fijas y observarlas.
Para las preparaciones fijas se utilizaron las muestras de tipos de cortes (practica 2).
Referencias:
http://sosbiologiacelularytisular.blogspot.mx/2011/11/tipos-de-musculo-corte-transversal.html

Practica 2: técnicas de cortes de tejidos

   Introducción:
Tipos de cortes:
Cortes parciales: también conocidos como corte local, y el motivo de este corte es para indicar determinada zona de la pieza, es decir si continúa más allá del diseño.
Cortes transversales: estos tipos de cortes ocurren tomando en cuenta la parte más ancha del objeto.
El Micrótomo de mano:
El micrótomo es un instrumento que se utiliza para realizar finos cortes de tejidos vegetales o animales, estos cortes son unas cuantas micras.
El Micrótomo de mano cilíndrico:
Se forma por una cuchilla de altura ajustable, una mesa redonda, según el modelo con una cuchilla hueco o plano y caja de madera, una construcción compacta.
Micrótomo para parafina: 

Se utiliza principalmente para material incluido en parafina y se obtienen secciones de 5 a 20 µm de grosor, para observar con el microscopio óptico.

Micrótomo de congelación: 

Con él se consiguen secciones de 30 a 80 µm de material congelado para su observación con el microscopio óptico

Objetivo:
Saber el uso adecuado del micrótomo, los tipos de cortes que pueden realizarse, Y con ello se mostrara que después de haber realizado un corte correcto, se obtiene una observación correcta en el microscopio.
Planteamiento problema:
El corte de la muestra debe ser muy delgado, que a contra luz traspase los rayos de luz para que al tapar con el cubreobjetos se pueda sellar bien.

Hipótesis:
1°: la muestra debe de estar bien colocado en el micrótomo para hacer correcto el corte.
2°: es recomendable pelar la muestra para que el corte sea más fácil de hacer.
3°: la navaja con la que se debe de hacer el corte debe de ser muy delgada para que al cortar sea más fácil y el corte sea muy delgado.
Material:
-micrótomo
-muestra ( insectos, verdura, fruta, etc.)
-navaja delgada

Metodología:
    Pelar la muestra antes de hacer el corte en el micrótomo.
    Cortar la muestra con una navaja muy delgada.
    Colocar con firmeza la muestra a cortar en el micrótomo hasta que no se tenga movimiento alguno.

Marco teórico:
1°-  identificar el uso del micrótomo, colocar la muestra en el micrótomo y apretar fuerte el tornillo para que no tenga movimiento alguno la muestra
2°- realizar el corte con extremo cuidado para que quede delgada la muestra.
3°-anotar las observaciones de la muestra a simple vista
4°- anota las observaciones de la muestra con vista en el microscopio.
  

Análisis de resultados:
Se tomaron dos muestras, una de una papa y otra de un pepino, para que en la siguiente practica se utilice y se observe las dos muestras.
Conclusión:
Fue complicado hacer el corte y tener la muestra muy delgada ya que las navajas que teníamos gruesas, aunque a simple vista es una práctica sencilla, no lo es, ya que es bastante tardado sacar la muestra delgada.
Referencias:

 http://www.monografias.com/trabajos11/intecnic/intecnic.shtml